Непрофесійний фагоцитоз клітин карциноми легені Льюїс за різних умов їх росту

Автор(и)

  • Д. Колесник Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • О. Лихова Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • Ю. Степанов Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • Г. Соляник Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2025.03.332

Ключові слова:

непрофесійний фагоцитоз, карцинома легені Льюїс, деадгезивний ріст, глюкозне голодування

Анотація

Стан питання. Відомо, що фагоцитоз зустрічається майже у всіх типах клітин багатоклітинних організмів. За ефективністю фагоцитозу клітини ділять на професійні та непрофесійні фагоцити. До останніх належать і пух- линні клітини. Така здатність пухлинних клітин обумовлює появу структур «клітина в клітині», високу частоту виникнення яких часто пов’язують з процесами інвазії та метастазування злоякісних новоутворень. Мета роботи — дослідити здатність клітин карциноми легені Льюїс до непрофесійного фагоцитозу та аналіз залежності цього процесу від умов росту пухлинних клітин. Матеріали та методи. Дослідження проводили з використанням низькометастатичного варіанту клітин карциноми легені Льюїс. Фагоцитарну активність клітин досліджували за умов як адгезивного, так і деадгезивного росту в стандартному культуральному середовищі та в безглюкозному. Дослідження фагоцитарної активності клітин проводили з використанням флуоресцентних латексних кульок розміром 1,0 мкм. Результати. Доведена здатність пухлинних клітин недрібноклітинного раку легені до фагоцитарної активності, інтенсифікація якої суттєво збільшувалась майже в 4 рази за умов деадгезивного росту незалежно від рівня експресії E-кадгерину. Глюкозне голодування пухлинних клітин за умов як адгезивного, так і деадгезивного росту обумовлювало більш ніж 2-разове зниження відсотка клітин, що поглинають латексні кульки на фоні збільшення кількості поглинутих кульок. Це вказує на суттєву гетерогенність популяції пухлинних клітин щодо їх чутливості до активації фагоцитарної активності дефіцитом глюкози. Висновки. Результати вказують на здатність пухлинних клітин недрібноклітинного раку легені до фагоцитарної активності, інтенсифікація якої суттєво збільшується за умов деадгезивного росту і слабо залежить від дефіциту глюкози.

Посилання

Uribe-Querol E, Rosales C. Phagocytosis: our current understanding of a universal biological process. Front Immu- nol. 2020:1066. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.01066.eCollection 2020

Rabinovitch M. Professional and non-professional phagocytes: an introduction. Trends Cell Biol. 1995;5:85-87. https://doi.org/10.1016/S0962-8924(00)88955-2

Fais S, Overholtzer M. Cell-in-cell phenomena in cancer. Nat Rev Cancer. 2018;18:758-766. https://doi.org/10.1038/ s41568-018-0073-9

Lozupone f, fais S. Cancer cell cannibalism: A primeval option to survive. Curr Mol Med. 2015;15(9):836-841. https://doi.org/10.2174/1566524015666151026100916.

He MF, Wang S, Wang y, et al. Modeling cell-in-cell structure into its biological significance. Cell Death Dis.

;4:e630. https://doi.org/10.1038/ cddis.2013.147

Schwegler M, Wirsing AM, Schenker hM, et al. Prognostic value of homotypic cell internalization by nonprofes- sional phagocytic cancer cells. Biomed Res Int. 2015;2015:359392. https://doi.org/10.1155/2015/359392

Mlynarczuk-Bialy I, dziuba I, Sarnecka A, et al. Entosis: from cell biology to clinical cancer pathology. Cancers (Ba- sel). 2020;12(9):2481. https://doi.org/10.3390/cancers12092481

dziuba I, Gawel AM, Tyrna P, et al. homotypic entosis as a potential novel diagnostic marker in breast cancer. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6819. https://doi.org/10.3390/ijms24076819

Liu X, Guo R, Li d, et al. homotypic cell-in-cell structure as a novel prognostic predictor in non-small cell lung cancer and frequently localized at the invasive front. Sci Rep. 2024;14(1):18952. https://doi.org/10.1038/s41598-024- 69833-2

Kulshrestha R, Negi A, Bhutani I, et al. Tumor cell phagocytosis (cannibalism) in lung cancer: possible biomarker for tumor immune escape and prognosis. Am J Transl Res. 2023;15(3):1935-1940. eCollection 2023

Solyanik GI, Pyaskovskaya ON, Garmanchuk LV. Cisplatin-resistant Lewis lung carcinoma cells possess increased level of VEGf secretion. Exp Oncol 2003;25(4):260-265.

Cai Q, Li y, Pei G. Polysaccharides from Ganoderma lucidum attenuate microglia-mediated neuroinflammation and modulate microglial phagocytosis and behavioural response. J Neuroinflammation. 2017;14:63-75. https://doi. org/10.1186/s12974-017-0839-0

Overholtzer M, Mailleux AA, Mouneimne G, et al. A nonapoptotic cell death process, entosis, that occurs by cell- in-cell invasion. Cell. 2007;131;966-979. https://doi.org/10.1016/j.cell.2007.10.040

Durgan J, Florey O. Cancer cell cannibalism: Multiple triggers emerge for entosis. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res. 2018;1865(6):831-841. https://doi.org/doi: 10.1016/j.bbamcr.2018.03.004

Sun Q, Cibas ES, huang h, et al. Induction of entosis by epithelial cadherin expression. Cell Res. 2014;24(11):1288- 1298. https://doi.org/10.1038/cr.2014.137

Unseld Lh, hildebrand LS, Putz f, et al. Non-professional phagocytosis increases in melanoma cells and tissues with increasing E-cadherin expression. Curr Oncol. 2023;30(8):7542-7552. https://doi.org/10.3390/curroncol30080547

Pastushenko I, Blanpain C. emt transition states during tumor progression and metastasis. Trends Cell Biol. 2019;29(3):212-226. https://doi.org/10.1016/j.tcb.2018.12.001

Rubtsova SN, Zhitnyak Iy, Gloushankova NA. dual role of E-cadherin in cancer cells. Tissue Barriers. 2022;10(4):2005420. https://doi.org/10.1080/21688370.2021.2005420

Na Ty, Schecterson L, Mendonsa AM, et al. The functional activity of E-cadherin controls tumor cell metastasis at multiple steps. Proc Natl Acad Sci USA. 2020;117(11):5931-5937. https://doi.org/10.1073/pnas.1918167117

Fontana R, Mestre-Farrera A, Yang J. Update On Epithelial-Mesenchymal Plasticity In Cancer Progression. Annu Rev Pathol. 2024;19:133-156. https://doi.org/10.1146/annurev-pathmechdis-051222-122423

Churchward MA, Tchir dR, Todd KG. Microglial function during glucose deprivation: inflammatory and neuro- psychiatric implications. Mol Neurobiol. 2018;55:1477-1487. https://doi.org/10.1007/s12035-017-0422-9

Hamann JC, Surcel A, Chen R, et al. Entosis is induced by glucose starvation. Cell Rep. 2017;20:201-210. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2017.06.037

Mosier JA, Schwager SC, Boyajian dA, et al. Cancer cell metabolic plasticity in migration and metastasis. Clin Exp Metastasis. 2021;38(4):343-359. https://doi.org/10.1007/s10585-021-10102-1

##submission.downloads##

Опубліковано

30.12.2025

Як цитувати

Колесник, Д., Лихова, О., Степанов, Ю., & Соляник, Г. (2025). Непрофесійний фагоцитоз клітин карциноми легені Льюїс за різних умов їх росту. Експериментальна онкологія, 47(3), 332–337. https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2025.03.332

Номер

Розділ

Оригінальні внески