Цитостатичні ефекти і механізми дії бактеріального лектину Bacillus Subtilis IMV B-7724 на клітини раку молочної залози різного молекулярного підтипу в системі in vitro

Автор(и)

  • Є. Лук’янова Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • О. Мушій Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • В. Базась Київський міський клінічний онкологічний центр, Київ, Україна
  • О. Вороніна Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • Н. Черемшенко Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2025.03.277

Ключові слова:

лектин, рак молочної залози, молекулярні підтипи

Анотація

Стан питання. Лектини — це білки, що зв’язують вуглеводи та мають широкий спектр біологічної активності; останнім часом вони дедалі більше розглядаються як перспективні агенти для діагностики та терапії раку. У даному дослідженні вивчали цитостатичні та цитотоксичні ефекти бактеріального лектину Bacillus subtilis IMV B-7724 на клітинних лініях раку молочної залози (РМЗ) різних молекулярних підтипів. Методи. Експерименти проводили на клітинах ліній T47D (люмінальний А), MCF‑ 7 (люмінальний B) та MDA-MB-468 (базальний, тричінегативний). Цитотоксичність оцінювали методом фарбування клітин кристалічним фіолетовим з визначенням LC₅₀/LC₃₀. Цитоморфологічні зміни аналізували на препаратах, зафарбованих за Романовським — Гімзою, та подальшою морфометрією в ImageJ. Для оцінки розподілу клітинного циклу та апоптозу (Annexin V/ PI-аналіз) застосовували проточну цитофлуориметрію. Експресію маркерів проліферації та регуляторів апоптозу (Ki-67, p53, Bcl-2, Bax) досліджували методом імуноцитохімії. Результати. Лектин виявив дозозалежну цитотоксичність у всіх досліджуваних клітинних лініях із значеннями LC₅₀ у межах 351—419 мкг/мл. Морфологічний аналіз показав підтип-специфічні зміни, зокрема округлення клітин, конденсацію ядер та зменшення об’єму цитоплазми, що вказує на апоптичні процеси. Проточна цитофлуориметрія виявила різні варіанти блокади клітинного циклу: накопичення клітин у S-фазі (T47D), зупинку у фазі G2/M (MCF‑ 7) та комбіновану блокаду S- і G2/M-фаз (MDA-MB-468). Тести на життєздатність підтвердили достовірне зниження кількості живих клітин переважно за рахунок пізнього апоптозу та некрозу, причому найсильніший ефект спостерігався у T47D. Імуноцитохімія продемонструвала значне зниження експресії Ki-67 і Bcl-2, підвищення рівня p53 та активацію BAX у клітинах MCF‑ 7, тоді як T47D характеризувалися парадоксальним зниженням BAX попри наявні ознаки апоптозу. Висновки. Лектин Bacillus subtilis IMV B-7724 індукує підтип-специфічну цитотоксичність клітин РМЗ шляхом пригнічення проліферації, порушення клітинного циклу та активації апоптозу. Його диференційна активність, особливо виражена у люмінальному B та потрійно-негативному підтипах, підкреслює його потенціал як селективного протипухлинного агента та кандидата для комбінованих терапевтичних стратегій. Подальші дослідження необхідні для з’ясування молекулярних мішеней та оптимізації застосування цього лектину в імунотерапії раку.

Посилання

Barre A, Bourne y, Van damme EJM, Rougé P. Overview of the structure-function relationships of mannose-specific lectins from plants, algae and fungi. Int J Mol Sci. 2019;20(2):254. https://doi.org/10.3390/ijms20020254

Dias Rde O, Machado Ldos S, Migliolo L, franco OL. Insights into animal and plant lectins with antimicrobial activi- ties. Molecules. 2015;20(1):519-541. https://doi.org/10.3390/molecules20010519

Čaval T, Alisson-Silva f, Schwarz f. Roles of glycosylation at the cancer cell surface: opportunities for large scale glycoproteomics. Theranostics. 2023;13(8):2605-2615. https://doi.org/10.7150/thno.81760

Thomas d, Rathinavel AK, Radhakrishnan P. Altered glycosylation in cancer: A promising target for biomarkers and therapeutics. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2021;1875(1):188464. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2020.188464

Yamashita K, Kuno A, Matsuda A, et al. Lectin microarray technology identifies specific lectins related to lymph node metastasis of advanced gastric cancer. Gastric Cancer. 2016;19(2):531-542. https://doi.org/10.1007/s10120- 015-0491-2

Na h, Liu X, Li X, et al. Novel roles of dC-SIGNR in colon cancer cell adhesion, migration, invasion, and liver metastasis. J Hematol Oncol. 2017;10(1):28. https://doi.org/10.1186/s13045-016-0383-x

Yin S, Li C, Shen X, et al. Siglec-G suppresses Cd8+ T Cells responses through metabolic rewiring and can be targeted to enhance tumor immunotherapy. Adv Sci (Weinh). 2024;11(45):e2403438. https://doi.org/10.1002/ advs.202403438

Rosato f, Pasupuleti R, Tomisch J, et al. A bispecific, crosslinking lectibody activates cytotoxic T cells and induces cancer cell death. J Transl Med. 2022;20(1):578. https://doi.org/10.1186/s12967-022-03794-w

Zhang C, Schumacher KN, dodds Ed, hage dS. Glycoprotein analysis using lectin microcolumns and capillary electrophoresis: сharacterization of alpha1-acid glycoprotein by combined separation methods. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2021;1179:122855. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2021.122855

Zou X, yoshida M, Nagai-Okatani C, et al. A standardized method for lectin microarray-based tissue glycome mapping. Sci Rep. 2017;7:43560. https://doi.org/10.1038/srep43560

Devi RV, Basil-Rose MR. Lectins as Ligands for directing nanostructured systems. Curr Drug Deliv. 2018;15(4):448- 452. https://doi.org/10.2174/1567201815666180108101246

Meléndez AV, Velasco Cárdenas RM, Lagies S, et al. Novel lectin-based chimeric antigen receptors target Gb3- positive tumour cells. Cell Mol Life Sci. 2022;79(10):513. https://doi.org/10.1007/s00018-022-04524-7

Pasupuleti R, Riedl S, Saltor Núñez L, et al. Lectin-anticancer peptide fusion demonstrates a significant cancer-cell- selective cytotoxic effect and inspires the production of «clickable» anticancer peptide in Escherichia coli. Protein Sci. 2023;32(12):e4830. https://doi.org/10.1002/pro.4830

Kuroda y, Oda T, Shimomura O, et al. Lectin-based phototherapy targeting cell surface glycans for pancreatic can- cer. Int J Cancer. 2023;152(7):1425-1437. https://doi.org/10.1002/ijc.34362

Chekhun Vf, didenko GV, Cheremshenko NL, et al. Strain of bacteria Bacillus subtilis ІMB В-7724 — producer of cytotoxic substances with antitumor activity (Pat. №131824 UA). Publ. 25.01.2019. Bul. №2. fedosova NI, Cherem- shenko NL, hetman KI, et al. Physicochemical and cytotoxicity properties of Bacillus subtilis ІМV В-7724 extracel- lular lectin. Mikrobiol Z. 2021;83:39-48. https://doi.org/10.15407/microbiolj83.01.039

Fedosova NI, Cheremshenko NL, hetman KI, et al. Physicochemical and cytotoxicity properties of Bacillus subtilis

ІМV В-7724 extracellular lectin. Mikrobiol Z. 2021;83:39-48. https://doi.org/10.15407/microbiolj83.01.039

Podgorsky VS. The method for the obtainment of bacterial lectin, specific to sialic acids (Pat. № 1791 UA). Publ. 23.01.1991. Bul. №1.

Chekhun S, Bezdenezhnykh N, Shvets J, Lukianova N. Expression of biomarkers related to cell adhesion, metastasis and invasion of breast cancer cell lines of different molecular subtype. Exp Oncol. 2013;35(3):174-179.

Chekhun SV, Lukyanova Ny, Shvets yV, et al. Significance of ferritin expression in formation of malignant pheno- type of human breast cancer cells. Exp Oncol. 2014;36(3):179-183.

feoktistova M, Geserick P, Leverkus M. Crystal Violet Assay for determining viability of cultured cells. Cold Spring Harb Protoc. 2016;2016(4):pdb.prot087379. https://doi.org/10.1101/pdb.prot087379

Wittekind dh. On the nature of Romanowsky — Giemsa staining and its significance for cytochemistry and histo- chemistry: an overall view. Histochem J. 1983;15(10):1029-1047. https://doi.org/10.1007/Bf01002498

Lukianova N, Zadvornyi T, Kashuba E, et al. Expression of markers of bone tissue remodeling in breast cancer and prostate cancer cells in vitro. Exp Oncol. 2022;44(1):39-46. https://doi.org/10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol- 44-no-1.17354

Chekhun V, Pavlova A, Zadvornyi T, et al. Expression of SPP1 and SPARC genes in tumor tissue of patients with breast cancer. Exp Oncol. 2024;46(1):13-21. https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2024.01.013

Hollestelle A, et al. distinct gene mutation profiles among luminal-type and basal-type breast cancer cell lines.

Breast Cancer Res Treat. 2010;121(1):53-64. https://doi.org/10.1007/s10549-009-0460-8

Lim Ly, Vidnovic N, Ellisen LW, Leong CO. Mutant p53 mediates survival of breast cancer cells. Br J Cancer. 2009;101(9):1606-1612. https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6605335

Stathopoulos GP, Malamos NA, Markopoulos C, et al. The role of Ki-67 in the proliferation and prognosis of breast cancer molecular classification subtypes. Anticancer Drugs. 2014;25(8):950-957. https://doi.org/10.1097/ CAd.0000000000000123

Terävä J, Verhassel A, Botti O, et al. Primary breast cancer biomarkers based on glycosylation and extracellular vesicles detected from human serum. Cancer Rep (Hoboken). 2022;5(8):e1540. https://doi.org/10.1002/cnr2.1540

Lomonosova E, Ryerse J, Chinnadurai G. BAX/BAK-independent mitoptosis during cell death induced by protea- some inhibition? Mol Cancer Res. 2009;7(8):1268-1284. https://doi.org/10.1158/1541-7786.MCR-08-0183

Vousden Kh, Prives C. Blinded by the light: the growing complexity of p53. Cell. 2009;137(3):413-431. https://doi. org/10.1016/j.cell.2009.04.037

##submission.downloads##

Опубліковано

30.12.2025

Як цитувати

Лук’янова, Є., Мушій , О., Базась , В., Вороніна , О., & Черемшенко , Н. (2025). Цитостатичні ефекти і механізми дії бактеріального лектину Bacillus Subtilis IMV B-7724 на клітини раку молочної залози різного молекулярного підтипу в системі in vitro. Експериментальна онкологія, 47(3), 277–287. https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2025.03.277

Номер

Розділ

Оригінальні внески