ОСТЕОПОНТИН-­РЕГУЛЬОВАНІ ЗМІНИ В ПОПУЛЯЦІЇ ОПАСИСТИХ КЛІТИН, АСОЦІЙОВАНІ З РАКОМ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ

Автор(и)

  • О. Мушій Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • А. Павлова Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • В. Базась Київський міський клінічний онкологічний центр, Київ, Україна
  • Т. Задворний Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна
  • Н. Лук’янова Інститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького НАН України, Київ, Україна

DOI:

https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2024.03.209

Ключові слова:

рак молочної залози, опасисті клітини, остеопонтин, прогнозування перебігу

Анотація

Стан питання. Доведено, що розвиток раку молочної залози (РМЗ) значною мірою визначається особливостями пухлинного мікрооточення, яке зазнає суттєвих змін під час прогресування захворювання. Одним з найменш вивчених компонентів пухлинного мікрооточення, роль якого при РМЗ залишається дискусійною, є опасисті клітини (ОК). Метою роботи було визначити прогностичне значення показників інфільтрації та функціональної активності ОК при РМЗ і встановити роль остеопонтину (ОПН) в їх регуляції. Матеріали та методи. Дослідження проведено на операційному матеріалі 15 хворих на фіброаденому та 78 хворих на РМЗ І—ІІ стадії. Ідентифікацію ОК у тканині доброякісних і злоякісних новоутворень молочної залози проводили гістохімічним методом з використанням толуїдинового синього. Для оцінки функціональної активності ОК розраховували індекс дегрануляції. Визначення експресії ОПН у пухлинній тканині проводили імуногістохімічним методом. Результати. Отримані дані свідчать, що рівень інфільтрації ОК та їхня функціональна активність асоційовані з такими показниками злоякісності РМЗ, як розмір пухлини, ураження лімфатичних вузлів, ступінь диференціювання, молекулярний підтип,  проліферативна  активність,  експресія  рецепторів  прогестерону та епідермального фактору росту (HER2/neu). Високі показники експресії ОПН у стромальному компоненті РМЗ асоціюються зі зростанням популяції пухлинних ОК з метастатичним ураженням регіонарних лімфатичних вузлів та низьким ступенем диференціювання. Крім того, ОПН бере участь у регуляції ОК у тканинах люмінального В і базального молекулярного підтипів. При цьому рівень експресії OПН в паренхіматозному компоненті пухлини асоціюється з показником інфільтрації ОК РМЗ при наявності метастатичного ураження регіонарних лімфатичних вузлів. Висновки. Подальше вивчення особливостей інфільтрації та функціональної активності ОК в тканині РМЗ дозволить з’ясувати їхній прогностичний потенціал і може стати основою для оптимізації лікування хворих.

Посилання

Bray F, Laversanne M, Sung H, et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2024;74(3):229­263. https://doi.org/10.3322/caac.21834

Chekhun V, Martynyuk О, Lukianova Y, et al. Features of breast cancer in patients of young age: search for diagnosis optimization and personalized treatment. Exp Oncol. 2023;45(2):139­150. doi: 10.15407/exp­oncology.2023.02.139

American Cancer Society: Atlanta. Breast Cancer Facts and Figures 2017–2018; GA, USA, 2017.

Yang J, Bahcecioglu G, Zorlutuna P. The Extracellular matrix and vesicles modulate the breast tumor microenviron­ ment. Bioengineering (Basel). 2020;7(4):124. https://doi.org/10.3390/bioengineering7040124

Tan Z, Kan C, Sun M, et al. Mapping breast cancer microenvironment through single­cell omics. Front Immunol.

;13:868813. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.868813

Ribatti D, Annese T, Tamma R. Controversial role of mast cells in breast cancer tumor progression and angiogenesis.

Clin Breast Cancer. 2021;21(6):486­491. https://doi.org/10.1016/j.clbc.2021.08.010

Maciel TT, Moura IC, Hermine O. The role of mast cells in cancers. F1000Prime Rep. 2015;7:09. https://doi. org/10.12703/P7­09

Sacks D, Baxter B, Campbell В, et al. Multisociety Consensus Quality Improvement Revised Consensus State­ ment for Endovascular Therapy of Acute Ischemic Stroke. Int J Stroke. 2018;13(6):612­632. https://doi. org/10.1177/1747493018778713

Dyduch G, Kaczmarczyk K, Okoń K. Mast cells and cancer: enemies or allies? Pol J Pathol. 2012;63(1):1­7.

Galli SJ, Tsai M. IgE and mast cells in allergic disease. Nat Med. 2012;18(5):693­704. https://doi.org/10.1038/nm.2755

Eissmann MF, Buchert M, Ernst M. IL33 and mast cells – the key regulators of immune responses in gastrointestinal cancers? Front Immunol. 2020;11:1389. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.01389

Tiwari A, Trivedi R, Lin SY. Tumor microenvironment: barrier or opportunity towards effective cancer therapy.

J Biomed Sci. 2022;29(1):83. https://doi.org/10.1186/s12929­022­00866­3

Zadvornyi T, Lukianova N, Borikun T, et al. Mast cells as a tumor microenvironment factor associated with the ag­ gressiveness of prostate cancer. Neoplasma. 2022;69(6):1490­1498. https://doi.org/10.4149/neo_2022_221014N1020

Lamort AS, Giopanou I, Psallidas I, et al. Osteopontin as a link between inflammation and cancer: the thorax in the spotlight. Cells. 2019;8(8):815. https://doi.org/10.3390/cells8080815

Linder DP, Poberiĭ IA, Rozkin MIa, et al. Morphometric analysis of a mast cell population. Arkh Patol. 1980;42(6):60­64.

McClelland RA, Wilson D, Leake R, et al. A multicentre study into the reliability of steroid receptor immunocy­ tochemical assay quantification. British Quality Control Group. Eur J Cancer. 1991;27(6):711­715. https://doi. org/10.1016/0277­5379(91)90171­9

Fedchenko N, Reifenrath J. Different approaches for interpretation and reporting of immunohistochemistry analysis results in the bone tissue ­ a review. Diagn Pathol. 2014;9:221. https://doi.org/10.1186/s13000­014­0221­9

Seyed Jafari SM, Hunger RE. IHC Optical density score: a new practical method for quantitative immunohisto­ chemistry image analysis. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2017;25(1):e12­e13. https://doi.org/10.1097/ PAI.0000000000000370

Chekhun V, Pavlova A, Zadvornyi T, et al. Expression of SPP1 and SPARC genes in tumor tissue of patients with breast cancer. Exp Oncol. 2024;46(1):13­21. https://doi.org/10.15407/exp­oncology.2024.01.013

Kashiwase Y, Morioka J, Inamura H, et al. Quantitative analysis of mast cells in benign and malignant breast le­ sions. Immunohistochemical study on formalin­fixed, paraffin­embedded tissues. Int Arch Allergy Immunol. 2004;134(3):199­205. https://doi.org/10.1159/000078766

Löfdahl B, Ahlin C, Holmqvist M, et al. Inflammatory cells in node­negative breast cancer. Acta Oncol. 2012;51(5):680­ 686. https://doi.org/10.3109/0284186X.2011.652737

Fakhrjou A, Naghavi­Behzad M, Montazeri V, et al. The relationship between histologic grades of invasive carcinoma of breast ducts and mast cell infiltration [published correction appears in South Asian J Cancer. 2016;5(3):166. doi: 10.4103/2278­330X.187594]. South Asian J Cancer. 2016;5(1):5­7. https://doi.org/10.4103/2278­330X.179699

Glajcar A, Szpor J, Pacek A, et al. The relationship between breast cancer molecular subtypes and mast cell popula­ tions in tumor microenvironment. Virchows Arch. 2017;470(5):505­515. https://doi.org/10.1007/s00428­017­2103­5

Pyla RD, Potekar RM, Patil VS, et al. Quantitative mast cell analysis and hormone receptor study (ER, PR and HER2/neu) in invasive carcinoma of breast. Indian J Pathol Microbiol. 2020;63(2):200­204. https://doi.org/10.4103/IJPM.IJPM_155_19

Xiang M, Gu Y, Zhao F, et al. Mast cell tryptase promotes breast cancer migration and invasion. Oncol Rep.

;23(3):615­619. https://doi.org/10.3892/or_00000676

Amini RM, Aaltonen K, Nevanlinna H, et al. Mast cells and eosinophils in invasive breast carcinoma. BMC Cancer.

;7:165. https://doi.org/10.1186/1471­2407­7­165

Keser SH, Kandemir NO, Ece D, et al. Relationship of mast cell density with lymphangiogenesis and prognostic pa­ rameters in breast carcinoma. Kaohsiung J Med Sci. 2017;33(4):171­180. https://doi.org/10.1016/j.kjms.2017.01.005

Zadvornyi T, Lukianova N, Borikun T, et al. Mast cells as a tumor microenvironment factor associated with the ag­ gressiveness of prostate cancer. Neoplasma. 2022;69(6):1490­1498. https://doi.org/10.4149/neo_2022_221014N1020

Lukianova N, Zadvornyi T, Kashuba E, et al. Expression of markers of bone tissue remodeling in breast cancer and prostate cancer cells in vitro. Exp Oncol. 2022;44(1):39­46. https://doi.org/10.32471/exp­oncology.2312­8852.vol­44­ no­1.17354

Baiula M, Spampinato S, Gentilucci L, et al. Novel ligands targeting α4β1 integrin: therapeutic applications and per­ spectives. Front Chem. 2019; 7:489. https://doi.org/10.3389/fchem.2019.00489

Abonia JP, Hallgren J, Jones T, et al. Alpha­4 integrins and VCAM­1, but not MAdCAM­1, are essential for re­ cruitment of mast cell progenitors to the inflamed lung. Blood. 2006;108(5):1588­1594. https://doi.org/10.1182/ blood­2005­12­012781

Nagasaka A, Matsue H, Matsushima H, et al. Osteopontin is produced by mast cells and affects IgE­mediated de­ granulation and migration of mast cells. Eur J Immunol. 2008;38(2):489­499. https://doi.org/10.1002/eji.200737057

##submission.downloads##

Опубліковано

19.12.2024

Як цитувати

Мушій , О., Павлова , А., Базась , В., Задворний , Т., & Лук’янова , Н. (2024). ОСТЕОПОНТИН-­РЕГУЛЬОВАНІ ЗМІНИ В ПОПУЛЯЦІЇ ОПАСИСТИХ КЛІТИН, АСОЦІЙОВАНІ З РАКОМ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ. Експериментальна онкологія, 46(3), 209–220. https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2024.03.209

Номер

Том 46 № 3 (2024): Експериментальна онкологія

Розділ

Оригінальні внески

Ліцензія

Авторське право (c) 2024 Експериментальна онкологія

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.