КОРЕКЦІЯ ПАТОЛОГІЧНИХ ЗМІН У СЛИННИХ ЗАЛОЗАХ ТВАРИН ЗА УМОВ ПАКЛІТАКСЕЛ­ІНДУКОВАНОЇ НЕЙРОПАТІЇ

Автор(и)

  • К. Тихонович Полтавський державний медичний університет
  • Т. Криворучко Полтавський державний медичний університет
  • Н. Нікітіна Інститут біології та медицини КНУ імені Т. Шевченка, Київ
  • С. Береговий Інститут біології та медицини КНУ імені Т. Шевченка, Київ
  • К. Непорада Полтавський державний медичний університет

DOI:

https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2024.01.038

Ключові слова:

паклітаксел, периферична нейропатія, слинні залози, оксидативний стрес, вітаміни, ніацин, тіамін, кобаламін

Анотація

Паклітаксел — високоефективний хіміотерапевтичний засіб для лікування раку молочної залози, яєчників та ін. У той же час він спричиняє периферичну нейропатію як побічний ефект у 45—70% хворих. Мета дослідження — вивчити вплив паклітаксел­індукованої периферичної нейропатії на розвиток патологічних змін у слинних за­ лозах тварин, а також з’ясувати можливість корекції виявлених змін комплексом вітамінів групи В та АТФ. Матеріали і методи. Нейропатію у тварин моделювали інтраперитонеальним введенням паклітакселу (2 мг/кг) упродовж 4 днів. Корекцію виявлених змін здійснювали введенням комплексу вітамінів групи В та АТФ протя­ гом 9 діб. У гомогенаті піднижньощелепних слинних залоз визначали активність α­амілази, загальну протеолі­ тичну активність, загальну антитриптичну активність, вміст молекул середньої маси, ТБК­активних продуктів, окисно­модифікованих білків та активність каталази. Результати. Встановлено, що за умов паклітаксел­інду­ кованої нейропатії у піднижньощелепних слинних залозах щурів протеїназно­інгібіторний потенціал вірогідно не змінювався порівняно з контролем. Показано вірогідне збільшення вмісту окисно­модифікованих протеїнів, молекул середньої маси та вмісту ТБК­активних продуктів за умов моделювання токсичної нейропатії відносно контролю. Активність каталази та амілази у піднижньощелепних слинних залозах тварин при цьому вірогідно зменшувалась. Введення комплексу вітамінів групи В та АТФ впродовж 9 днів за умов токсичної невропатії нормалізувало загальну антитриптичну активність та активність амілази, приводило до вірогідного зниження вмісту окисно­модифікованих протеїнів, молекул середньої маси та вмісту ТБК­активних продуктів у гомо­ генаті слинних залоз тварин порівняно з групою щурів, яким моделювали токсичну нейропатію без корекції. Активність каталази в слинних залозах щурів, яким вводили комплекс вітамінів групи В та АТФ за умов паклі­ таксел­індукованої нейропатії, вірогідно збільшується у порівнянні з тваринами, яким моделювали невропатію без корекції, але є нижчою порівняно з інтактними тваринами. Висновки. Паклітаксел­індукована нейропатія викликає розвиток патологічних змін у слинних залозах щурів, про що свідчить карбонільно­оксидативний стрес та порушення білок­синтетичної функції. Експериментальна корекція комплексом вітамінів групи В та АТФ відновлювала білок­синтетичну функцію слинних залоз щурів, пригнічувала оксидативний стрес, нор­ малізувала вільнорадикальні процеси та відновлювала протеїназно­інгібіторний баланс.

Посилання

Sung H, Ferlay J, Siegel RL, et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2021;71(3):209-249. https://doi.org/10.3322/caac.21660

Zub VO, Kotuza AS. State of providing oncological aid to the population of Ukraine in wartime conditions. Rep Vinnytsia Nat Med Univ. 2022;26(4):614-617. https://doi.org/10.31393/reports-vnmedical-2022-26(4)-16

Cancer in Ukraine 2021–2022: Incidence, mortality, prevalence and other relevant statistics. Bull Nat Cancer Reg Ukraine N24, 2021-2022. Kyiv – 2023. http://www.ncru.inf.ua/publications/BULL_24/index_e.htm

Pulnyi Yu, Panfilova H. Study of the oncoprofile of the population of Ukraine according to the data of the National Cancer Registry. Grail of Science. 2021;1:474-478 (in Ukrainian). https://doi.org/10.36074/grail-of-science.19.02.2021.101

Eldridge S, Guo L, Hamre J 3rd. A comparative review of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in in vivo and in vitro models. Toxicol Pathol. 2020;48(1):190-201. https://doi.org/10.1177/0192623319861937

Ventzel L, Jensen AB, Jensen AR, et al. Chemotherapy-induced pain and neuropathy: a prospective study in patients treated with adjuvant oxaliplatin or docetaxel. Pain. 2016;157(3):560-568. https://doi.org/10.1097/j.pain.000000000000040

Song SJ, Min J, Suh SY, et al. Incidence of taxane-induced peripheral neuropathy receiving treatment and prescription patterns in patients with breast cancer. Support Care Cancer. 2017;25(7):2241-2248. https://doi.org/10.1007/s00520-017-3631-x

Seretny M, Currie GL, Sena ES, et al. Incidence, prevalence, and predictors of chemotherapy-induced peripheral neuropathy: A systematic review and meta-analysis. Pain. 2014;155(12):2461-70.

Kanzawa-Lee GA. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: nursing implications. J Infus Nurs. 2020;43(3):155-166. https://doi.org/10.1097/NAN.0000000000000368. PMID: 32287170.

Hershman DL, Lacchetti C, Dworkin RH, et al. Prevention and management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in survivors of adult cancers: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. J Clin Oncol. 2014;32(18):1941-1967. https://doi.org/10.1200/JCO.2013.54.0914

Schloss J, Colosimo M. B vitamin complex and chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Curr Oncol Rep. 2017;19(12):76. https://doi.org/10.1007/s11912-017-0636-z

Yeroshenko HA, Shevchenko KV, Kramarenko DR, et al. Structural-functional features of salivary glands of mixed secretion. Bull Probl Biol Med. 2019;2(149):30-34 (in Ukrainian).

Mortazavi H, Baharvand M, Movahhedian A, et al. Xerostomia due to systemic disease: a review of 20 conditions and mechanisms. Ann Med Health Sci Res. 2014;4(4):503-510. https://doi.org/10.4103/2141-9248.139284

Borgnakke WS, Anderson PF, Shannon C, et al. Is there a relationship between oral health and diabetic neuropathy? Curr Diab Rep. 2015;15(11):93. https://doi.org/10.1007/s11892-015-0673-7

Sato T, Mito K, Ishii H. Relationship between impaired parasympathetic vasodilation and hyposalivation in parotid glands associated with type 2 diabetes mellitus. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 20201;318(5):R940-R949. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00016.2019

Szklener K, Szklener S, Michalski A, et al. Dietary supplements in chemotherapy-induced peripheral neuropathy: a new hope? Nutrients. 2022;14(3):625. https://doi.org/10.3390/nu14030625

Hamity MV, White SR, Walder RY, et al. Nicotinamide riboside, a form of vitamin B3 and NAD+ precursor, relieves the nociceptive and aversive dimensions of paclitaxel-induced peripheral neuropathy in female rats. Pain. 2017;158(5):962-972. doi: 10.1097/j.pain.0000000000000862

Santos-Nogueira E, Redondo Castro E, Mancuso R, et al. Randall-Selitto test: a new approach for the detection of neuropathic pain after spinal cord injury. J Neurotrauma. 2012;29(5):898-904. https://doi.org/10.1089/neu.2010.1700

Kotvytska AA, Tykhonovych KV, Kryvoruchko TD, Neporada KS, et al. Paclitaxel-induced neuropathy induces changes in oral cavity organs of rats. Reg Mech Biosystems. 2023;14(1):102-105. https://doi.org/10.15421/022315

Gornstein E., Schwarz TL. The paradox of paclitaxel neurotoxicity: mechanisms and unanswered questions. Neuropharmacology. 2014;76:175-183. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2013.08.016

Duggett NA, Griffiths LA, McKenna OE, et al. Oxidative stress in the development, maintenance and resolution of paclitaxel-induced painful neuropathy. Neurosci. 2016;333:13-26. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2016.06.050

Staff NP, Fehrenbacher JC, Caillaud M, et al. Pathogenesis of paclitaxel-induced peripheral neuropathy: a current review of in vitro and in vivo findings using rodent and human model systems. Exp Neurol. 2020; 324:113-121. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2019.113121

Miao H, Xu J, Xu D, et al. Nociceptive behavior induced by chemotherapeutic paclitaxel and beneficial role of antioxidative pathways. Physiol Res. 2019;68(3):491-500. https://doi.org/10.33549/physiolres.933939

Sun H, Guo X, Wang Z, et al. Alphalipoic acid prevents oxidative stress and peripheral neuropathy in nab-paclitaxel-treated rats through the Nrf2 signalling pathway. Oxid Med Cell Longev. 2019;2019:3142732. https://doi.org/10.1155/2019/3142732

Smith EM, Pang H, Cirrincione C, et al. Alliance for clinical trials in oncology. Effect of duloxetine on pain, function, and quality of life among patients with chemotherapy-induced painful peripheral neuropathy: a randomized clinical trial. JAMA. 2013;309(13):1359-1367. https://doi.org/10.1001/jama.2013.2813

Majithia N, Temkin SM, Ruddy KJ, et al. National cancer institute-supported chemotherapy-induced peripheral neuropathy trials: outcomes and lessons. Support Care Cancer. 2016;24(3):1439-1447. https://doi.org/10.1007/s00520-015-3063-4

##submission.downloads##

Опубліковано

31.05.2024

Як цитувати

Тихонович , К., Криворучко , Т., Нікітіна, Н., Береговий , С., & Непорада , К. (2024). КОРЕКЦІЯ ПАТОЛОГІЧНИХ ЗМІН У СЛИННИХ ЗАЛОЗАХ ТВАРИН ЗА УМОВ ПАКЛІТАКСЕЛ­ІНДУКОВАНОЇ НЕЙРОПАТІЇ. Експериментальна онкологія, 46(1), 38–44. https://doi.org/10.15407/exp-oncology.2024.01.038

Номер

Розділ

Оригінальні внески