ОЦІНКА ЕФЕКТИВНОСТІ ЗАСТОСУВАННЯ АЛЬФА-ЛІПОЄВОЇ КИСЛОТИ ТА ІПІДАКРИНУ ГІДРОХЛОРИДУ ДЛЯ ПРОФІЛАКТИКИ ПАКЛІТАКСЕЛ-ІНДУКОВАНОЇ ПЕРИФЕРИЧНОЇ НЕЙРОПАТІЇ ЗА ДАНИМИ ЕЛЕКТРОНЕЙРОМІОГРАФІЧНОГО ДОСЛІДЖЕННЯ ПОВЕРХНЕВИХ МАЛОГОМІЛКОВИХ ТА ЛИТКОВИХ НЕРВІВ
DOI:
https://doi.org/10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol-44-no-4.19030Ключові слова:
паклітаксел, хіміотерапія, нейропатія, електронейроміографія, альфа-ліпоєва кислота, інгібітори ацетилхолінестерази.Анотація
Мета: дослідити особливості нейрофункціональних параметрів у хворих на рак грудної залози з паклітаксел-індукованою периферичною нейропатією та з’ясувати доцільність застосування альфа-ліпоєвої кислоти в комбінації з іпідакрину гідрохлоридом для її профілактики. Матеріали та методи: 100 хворих на рак грудної залози T1–4N0–3M0–1, яким була показана поліхіміотерапія за схемою АТ (паклітаксел, доксорубіцин) або ЕТ (паклітаксел, епірубіцин), рандомізовано у дві групи. Перша група (n = 50) — хворі на рак грудної залози T1-4N0-3M0-1, які отримали від трьох до шести циклів поліхіміотерапії за схемою АТ або ЕТ у неоад’ювантному, ад’ювантному або паліативному режимі без застосування досліджуваної схеми профілактики нейропатії (альфа-ліпоєва кислота в комбінації з іпідакрину гідрохлоридом). Друга група (n = 50) — хворі на рак грудної залози T1-4N0-3M0-1, які отримали від трьох до шести циклів поліхіміотерапії за вказаною схемою із використанням досліджуваної схеми профілактики нейропатії. Проведено електронейро-міографічне дослідження сенсорних (поверхневі малогомілкові та литкові) нервів до початку хіміотерапії, після 3-го та 6-го циклів поліхіміотерапії. Результати: Виявлені нами електрофізіологічні порушення у сенсорних нервах проявлялися у вигляді аксональної сенсорної периферичної нейропатії симетричного характеру, що відображалося у зниженні амплітуди потенціалу дії поверхневих мало¬гомілкових та литкових нервів. Зниження потенціалу дії у сенсорних нервах було домінантним, на відміну від швидкості проведення збудження, яка в більшості пацієнтів залишалася в межах референтних значень. Це підтверджує найбільш поширену теорію пато¬генезу паклітаксел-індукованої периферичної нейропатії, яка стверджує, що в її основі лежить аксональна дегенерація, а не демієлінізація. Також шляхом визначення статистично значущих відмінностей у показниках електронейроміографічного тестування сенсорних нервів пацієнтів між досліджуваними групами встановлено, що застосування препарату альфа-ліпоєвої кислоти в поєднанні з інгібітором ацетилхолінестерази — іпідакрину гідрохлоридом вагомо зменшує тяжкість ураження поверхневих малогомілкових та литкових нервів при застосуванні поліхіміотерапії з паклітакселом, судячи з показників амплітуди потенціалу дії, тривалості та площі відповіді на стимуляцію. Висновки: Застосування альфа-ліпоєвої кислоти в поєднанні з іпідакрину гідрохлоридом дозволяє зменшити тяжкість ураження поверхневих малогомілкових та литкових нервів, спричинені поліхіміотерапією з паклітакселом.
Посилання
Kudlowitz D, Muggia F. Defining risks of taxane neuropathy: insights from randomized clinical trials. Clin Cancer Res 2013; 19: 4570–7. doi: https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-13-0572
Park SB, Kwok JB, Loy CT, et al. Paclitaxel-induced neuropathy: potential association of MAPT and GSK3B genotypes. BMC Cancer 2014; 14: 993. doi: https://doi.org/10.1186/1471-2407-14-993
Seretny M, Currie GL, Sena ES, et al. Incidence, prevalence, and predictors of chemotherapy-induced peripheral neuropathy: A systematic review and meta-analysis. Pain 2014; 155: 2461–70.
Scripture CD, Figg WD, Sparreboom A. Peripheral neuropathy induced by paclitaxel: recent insights and future perspectives. Curr Neuropharmacol 2006; 4: 165–72. doi:10.2174/157015906776359568
Tanabe Y, Hashimoto K, Shimizu C, et al. Paclitaxel-induced peripheral neuropathy in patients receiving adjuvant chemotherapy for breast cancer. Int J Clin Oncol 2013; 18: 132–8. doi: https://doi.org/10.1007/s10147-011-0352-x
Staff NP, Grisold A, Grisold W, et al. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: A current review. Ann Neurol 2017; 81: 772–81. doi: https://doi.org/10.1002/ana.24951
Colvin LA. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: where are we now? Pain 2019; 160: 1–10. doi: https://doi.org/10.1097/j.pain.0000000000001540
Loprinzi CL, Lacchetti C, Bleeker J, et al. Prevention and management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in survivors of adult cancers: ASCO guideline update. J Clin Oncol 2020; 38: 3325–48. doi: https://doi.org/10.1200/jco.20.01399
Hershman DL, Lacchetti C, Dworkin RH, et al. Prevention and management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in survivors of adult cancers: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. J Clin Oncol 2014; 32: 1941-67. doi: https://doi.org/10.1200/JCO.2013.54.0914
Bachegowda LS, Makower DF, Sparano JA. Taxanes: impact on breast cancer therapy. Anticancer Drugs 2014; 25: 512–21. doi: https://doi.org/10.1097/CAD.0000000000000090
Dyck PJ, Karnes JL, Daube J, et al. Clinical and neuropathological criteria for the diagnosis and staging of diabetic polyneuropathy. Brain 1985; 108: 861–80. doi: https://doi.org/10.1093/brain/108.4.861
Esper GJ, Nardin RA, Benatar M, et al. Sural and radial sensory responses in healthy adults: diagnostic implications for polyneuropathy. Muscle Nerve 2005; 31: 628–32. doi: https://doi.org/10.1002/mus.20313
Rivner MH, Swift TR, Malik K. Influence of age and height on nerve conduction. Muscle Nerve 2001; 24: 1134–41. doi: https://doi.org/10.1002/mus.1124
LoMonaco M, Milone M, Batocchi AP, et al. Cisplatin neuropathy: clinical course and neurophysiological findings. J Neurol 1992; 239: 199–204. doi: https://doi.org/10.1007/BF00839140
Chaudhry V, Rowinsky EK, Sartorius SE, et al. Peripheral neuropathy from taxol and cisplatin combination chemotherapy: clinical and electrophysiological studies. Ann Neurol 1994; 35: 304–11. doi: https://doi.org/10.1002/ana.410350310
Pietrangeli A, Leandri M, Terzoli E, et al. Persistence of high-dose oxaliplatin-induced neuropathy at long-term follow-up. Eur Neurol 2006; 56: 13–6.
Lehky TJ, Leonard GD, Wilson RH, et al. Oxaliplatin-induced neurotoxicity: acute hyperexcitability and chronic neuropathy. Muscle Nerve 2004; 29: 387–92.
Argyriou AA, Kyritsis AP, Makatsoris T, et al. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy in adults: a comprehensive update of the literature. Cancer Manag Res 2014; 6: 135–47. doi:10.2147/CMAR.S44261
Park SB, Goldstein D, Krishnan AV, et al. Chemotherapy-induced peripheral neurotoxicity: a critical analysis. CA Cancer J Clin 2013; 63: 419–37. doi:10.3322/caac.21204
Fehrenbacher JC. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Prog Mol Biol Transl Sci 2015; 131: 471–508. doi: https://doi.org/10.1016/bs.pmbts.2014.12.002
Holotiuk IS, Kryzhanivska AY, Holotiuk SI, et al. Evaluation of the efficiency of alpha-lipoic acid and ipidacrine hydrochloride for the prevention of paclitaxel-induced peripheral neuropathy according to the Total Neuropathy Score. Exp Oncol 2022; 44: 75–82. doi: 10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol-44-no-1.17257
Berger T, Malayeri R, Doppelbauer A, et al. Neurological monitoring of neurotoxicity induced by paclitaxel/cisplatin chemotherapy. Eur J Cancer 1997; 33: 1393–9.
Gornstein E, Schwarz TL. The paradox of paclitaxel neurotoxicity: Mechanisms and unanswered questions. Neuropharmacology 2014; 76: 175–83.
Cavaletti G, Tredici G, Braga M, et al. Experimental peripheral neuropathy induced in adult rats by repeated intraperitoneal administration of taxol. Exp Neurol 1995; 133: 64-72. doi: https://doi.org/10.1006/exnr.1995.1008
Cavaletti G, Cavalletti E, Montaguti P, et al. Effect on the peripheral nervous system of the short-term intravenous administration of paclitaxel in the rat. Neurotoxicology 1997; 18: 137–45.
Peters CM, Jimenez-Andrade JM, Kuskowski MA, et al. An evolving cellular pathology occurs in dorsal root ganglia, peripheral nerve and spinal cord following intravenous administration of paclitaxel in the rat. Brain Res 2007; 1168: 46–59. doi: https://doi.org/10.1016/j.brainres.2007.06.066
Imai S, Koyanagi M, Azimi Z, et al. Taxanes and platinum derivatives impair Schwann cells via distinct mechanisms. Sci Rep 2017; 7: 5947. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-017-05784-1
Masurovsky EB, Peterson ER, Crain SM, et al. Morphological alterations in dorsal root ganglion neurons and supporting cells of organotypic mouse spinal cord-ganglion cultures exposed to taxol. Neuroscience 1983; 10: 491–509. doi: https://doi.org/10.1016/0306-4522(83)90148-3
Molè-Bajer J, Bajer AS. Action of taxol on mitosis: modification of microtubule arrangements and function of the mitotic spindle in Haemanthus endosperm. J Cell Biol 1983; 96: 527-40. doi: https://doi.org/10.1083/jcb.96.2.527
De Brabander M, Geuens G, Nuydens R, et al. Taxol induces the assembly of free microtubules in living cells and blocks the organizing capacity of the centrosomes and kinetochores. Proc Natl Acad Sci USA 1981; 78: 5608–12. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.78.9.5608
Letourneau PC, Ressler AH. Inhibition of neurite initiation and growth by taxol. J Cell Biol 1984; 98: 1355–62. doi: https://doi.org/10.1083/jcb.98.4.1355
Letourneau PC, Shattuck TA, Ressler AH. Branching of sensory and sympathetic neurites in vitro is inhibited by treatment with taxol. J Neurosci 1986; 6: 1912–7. doi: https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.06-07-01912.1986
Lipton RB, Apfel SC, Dutcher JP, et al. Taxol produces a predominantly sensory neuropathy. Neurology 1989; 39: 368–73. doi: https://doi.org/10.1212/wnl.39.3.368
Röyttä M, Horwitz SB, Raine CS. Taxol-induced neuropathy: short-term effects of local injection. J Neurocytol 1984; 13: 685–701. doi: https://doi.org/10.1007/BF01148489
Röytta M, Raine CS. Taxol-induced neuropathy: further ultrastructural studies of nerve fibre changes in situ. J Neurocytol 1985; 14: 157–75. doi: https://doi.org/10.1007/BF01150269
Röyttä M, Raine CS. Taxol-induced neuropathy: chronic effects of local injection. J Neurocytol 1986; 15: 483–96. doi: https://doi.org/10.1007/BF01611731
Gedlicka C, Kornek GV, Schmid K, et al. Amelioration of docetaxel/cisplatin induced polyneuropathy by alpha-lipoic acid. Ann Oncol 2003; 14: 339–40. doi: https://doi.org/10.1093/annonc/mdg051
Melli G, Taiana M, Camozzi F, et al. Alpha-lipoic acid prevents mitochondrial damage and neurotoxicity in experimental chemotherapy neuropathy. Exp Neurol 2008; 214: 276–84. doi: https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2008.08.013
Schloss J, Colosimo M, Vitetta L. New insights into potential prevention and management options for chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Asia Pac J Oncol Nurs 2016; 3: 73–85. doi: 10.4103/2347-5625.170977
Kyte SL, Toma W, Bagdas D, et al. Nicotine prevents and reverses paclitaxel-induced mechanical allodynia in a mouse model of CIPN. J Pharmacol Exp Ther 2018; 364: 110–9. doi: https://doi.org/10.1124/jpet.117.243972
Toma W, Kyte SL, Bagdas D, et al. The α7 nicotinic receptor silent agonist R-47 prevents and reverses paclitaxel-induced peripheral neuropathy in mice without tolerance or altering nicotine reward and withdrawal. Exp Neurol 2019; 320: 113010. doi: https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2019.113010
Ishii N, Tsubouchi H, Miura A, et al. Ghrelin alleviates paclitaxel-induced peripheral neuropathy by reducing oxidative stress and enhancing mitochondrial anti-oxidant functions in mice. Eur J Pharmacol 2018; 819: 35–42. doi: https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2017.11.024
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2023 Експериментальна онкологія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
