ОЦІНКА ЕФЕКТИВНОСТІ ЗАСТОСУВАННЯ АЛЬФА-ЛІПОЄВОЇ КИСЛОТИ ТА ІПІДАКРИНУ ГІДРОХЛОРИДУ ДЛЯ ПРОФІЛАКТИКИ ПАКЛІТАКСЕЛ-ІНДУКОВАНОЇ ПЕРИФЕРИЧНОЇ НЕЙРОПАТІЇ ЗА ДАНИМИ ОЦІНОЧНОЇ ШКАЛИ TOTAL NEUROPATHY SCORE
DOI:
https://doi.org/10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol-44-no-1.17257Ключові слова:
паклітаксел, хіміотерапія, нейропатія, Total Neuropathy Score, альфа-ліпоєва кислота, інгібітори ацетилхолінестерази.Анотація
Мета: Оцінити ефективність призначення комбінації альфа-ліпоєвої кислоти та інгібітора ацетилхолінестерази — іпідакрину гідрохлориду для запобігання розвитку та покращення перебігу паклітаксел-індукованої периферичної нейропатії у пацієнтів з раком грудної залози за даними оціночної шкали Total Neuropathy Score. Матеріали та методи: 32 хворих на рак грудної залози T1–4N0–3M0–1, яким була показана поліхіміотерапія за схемою АТ (паклітаксел, доксорубіцин) або ЕТ (паклітаксел, епірубіцин), рандомізовано у дві групи. Хворі першої групи (n = 16) не отримували додатково препаратів для профілактики нейропатії. Хворим другої групи (n = 16) з метою профілактики нейропатії призначали альфа-ліпоєву кислоту та іпідакрину гідрохлорид. Проведено комплексне неврологічне обстеження пацієнтів за всіма десятьма параметрами оціночної шкали Total Neuropathy Score до початку хіміотерапії й після 3-го та 6-го циклів хіміотерапії. Кожен параметр оцінювали від 0 (відсутність дефіциту) до 4 (відсутність функції/найважчий дефіцит). Отримані за результатами обстеження бали підсумовували, щоб отримати загальний бал від 0 до 40. Результати: Застосування альфа-ліпоєвої кислоти в поєднанні з інгібітором ацетилхолінестерази — іпідакрину гідрохлоридом достовірно зменшує вираженість симптомів та тяжкість паклітаксел-індукованої периферичної нейропатії. Прояви паклітаксел-індукованої периферичної нейропатії у хворих контрольної групи були достовірно важчими порівняно з групою, в якій застосовували досліджувані препарати. Середня ступінь важкості нейропатії після 3 та 6 циклів становила 1,75 та 2,62 у І групі та 1,12 та 1,62 у ІІ групі відповідно (покращення на 15,75% (р < 0,05) та 25,00% (р < 0,001) після 3 та 6 циклів відповідно).
Посилання
Kellokumpu-Lehtinen P, Tuunanen T, Asola R, et al. Weekly paclitaxel-an effective treatment for advanced breast cancer. Anticancer Res 2013; 33: 2623–7.
Kampan NC, Madondo MT, McNally OM, et al. Paclitaxel and its evolving role in the management of ovarian cancer. Biomed Res Int 2015; 2015: 1–21. https://doi.org/10.1155/2015/413076
Kosmidis P, Fountzilas G, Baka S, et al. Combination chemotherapy with paclitaxel and gemcitabine followed by concurrent chemoradiotherapy in non-operable localized non-small cell lung cancer. A hellenic cooperative oncology group (HeCOG) phase II study. Anticancer Res 2007; 27: 4391–5.
Schiff PB, Horwitz SB. Taxol stabilizes microtubules in mouse fibroblast cells. Proc Natl Acad Sci USA 1980; 77: 1561–5. https://doi.org/10.1073/pnas.77.3.1561
Verweij J, Clavel M, Chevalier B. Paclitaxel (Taxol) and docetaxel (Taxotere): not simply two of a kind. Ann Oncol 1994; 5: 495–505. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.annonc.a058903
Pasquier E, Honore S, Pourroy B, et al. Antiangiogenic concentrations of paclitaxel induce an increase in microtubule dynamics in endothelial cells but not in cancer cells. Cancer Res 2005; 65: 2433–40. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-04-2624
Postma TJ, Vermorken JB, Liefting AJ, et al. Paclitaxel-induced neuropathy. Ann Oncol 1995; 6: 489–94. https://doi.org/10.2174/157015906776359568
Forsyth PA, Balmaceda C, Peterson K, et al. Prospective study of paclitaxel-induced peripheral neuropathy with quantitative sensory testing. J Neurooncol 1997; 35: 47–53. https://doi.org/10.1023/a:1005805907311
Seretny M, Currie GL, Sena ES, et al. Incidence, prevalence, and predictors of chemotherapy-induced peripheral neuropathy: A systematic review and meta-analysis. Pain 2014; 155: 2461–70. https://doi.org/10.1016/j.pain.2014.09.020
Windebank AJ, Grisold W. Chemotherapy-induced neuropathy. J Peripher Nerv Syst 2008; 13: 27–46. https://doi.org/10.1111/j.1529-8027.2008.00156.x
Hershman DL, Lacchetti C, Dworkin RH, et al. Prevention and management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in survivors of adult cancers: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. J Clin Oncol 2014; 32: 1941–67. https://doi.org/10.1200/JCO.2013.54.0914
Tofthagen C. Patient perceptions associated with chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Clin J Oncol Nurs 2010; 14: 22–8. https://doi.org/10.1188/10.CJON.E22-E28
Kuroi K, Shimozuma K. Neurotoxicity of taxanes: symptoms and quality of life assessment. Breast Cancer 2004; 11: 92–9. https://doi.org/10.1007/BF02968010
Miaskowski C, Mastick J, Paul SM, et al. Impact of chemotherapy-induced neurotoxicities on adult cancer survivors’ symptom burden and quality of life. J Cancer Surviv 2018; 12: 234–45. https://doi.org/10.1007/s11764-017-0662-8
Hagiwara H, Sunada Y. Mechanism of taxane neurotoxicity. Breast Cancer 2004; 11: 82–5. https://doi.org/10.1007/BF02968008
Gornstein E, Schwarz TL. The paradox of paclitaxel neurotoxicity: Mechanisms and unanswered questions. Neuropharmacology 2014; 76: 175–83. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2013.08.016
Duggett NA, Griffiths LA, McKenna OE, et al. Oxidative stress in the development, maintenance and resolution of paclitaxel-induced painful neuropathy. Neuroscience 2016; 333: 13–26. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2016.06.050
Carozzi VA, Canta A, Chiorazzi A. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: What do we know about mechanisms? Neurosci Lett 2015; 596: 90–107. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2014.10.014
Ishii N, Tsubouchi H, Miura A, et al. Ghrelin alleviates paclitaxel-induced peripheral neuropathy by reducing oxidative stress and enhancing mitochondrial anti-oxidant functions in mice. Eur J Pharmacol 2018; 819: 35–42. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2017.11.024
Karpińska A, Gromadzka G. Oxidative stress and natural antioxidant mechanisms: the role in neurodegeneration. From molecular mechanisms to therapeutic strategies. Postepy Hig Med Dosw 2013; 67: 43–53 (in Polish). https://doi.org/10.5604/17322693.1029530
Ramanathan B, Jan KY, Chen CH, et al. Resistance to paclitaxel is proportional to cellular total antioxidant capacity. Cancer Res 2005; 65: 8455–60. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-05-1162
Gedlicka C, Kornek GV, Schmid K, et al. Amelioration of docetaxel/cisplatin induced polyneuropathy by alpha-lipoic acid. Ann Oncol 2003; 14: 339–40. https://doi.org/10.1093/annonc/mdg051
Mrakic-Sposta S, Vezzoli A, Maderna L, et al. R(+)-thioctic acid effects on oxidative stress and peripheral neuropathy in type ii diabetic patients: preliminary results by electron paramagnetic resonance and electroneurography. Oxid Med Cell Longev 2018; 2018: 1767265. https://doi.org/10.1155/2018/1767265
Melli G, Taiana M, Camozzi F, et al. Alpha-lipoic acid prevents mitochondrial damage and neurotoxicity in experimental chemotherapy neuropathy. Exp Neurol 2008; 214: 276–84. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2008.08.013
Agathos E, Tentolouris A, Eleftheriadou I, et al. Effect of α-lipoic acid on symptoms and quality of life in patients with painful diabetic neuropathy. J Int Med Res 2018; 46: 1779–90. https://doi.org/10.1177/0300060518756540
Jin HY, Lee NY, Ko HA, et al. Comparison of sensory tests and neuronal quantity of peripheral nerves between streptozotocin (STZ)-induced diabetic rats and paclitaxel (PAC)-treated rats. Somatosens Mot Res 2016; 33: 186–95. https://doi.org/10.1080/08990220.2016.1239577
Schloss J, Colosimo M, Vitetta L. New insights into potential prevention and management options for chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Asia Pac J Oncol Nurs 2016; 3: 73–85. https://doi.org/10.4103/2347-5625.170977
Takada-Takatori Y, Kume T, Sugimoto M, et al. Acetylcholinesterase inhibitors used in treatment of Alzheimer’s disease prevent glutamate neurotoxicity via nicotinic acetylcholine receptors and phosphatidylinositol 3-kinase cascade. Neuropharmacology 2006; 51: 474–86. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2006.04.007
Di Cesare Mannelli L, Zanardelli M, Ghelardini C. Nicotine is a pain reliever in trauma- and chemotherapy-induced neuropathy models. Eur J Pharmacol 2013; 711: 87–94. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2013.04.022
Di Cesare Mannelli L, Pacini A, Matera C, et al. Involvement of α7 nAChR subtype in rat oxaliplatin-induced neuropathy: effects of selective activation. Neuropharmacology 2014; 79: 37–48. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2013.10.034
Ferrier J, Bayet-Robert M, Dalmann R, et al. Cholinergic neurotransmission in the posterior insular cortex is altered in preclinical models of neuropathic pain: key role of muscarinic M2 receptors in donepezil-induced antinociception. J Neurosci 2015; 35: 16418–30. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1537-15.2015
Romero HK, Christensen SB, Di Cesare Mannelli L, et al. Inhibition of α9α10 nicotinic acetylcholine receptors prevents chemotherapy-induced neuropathic pain. Proc Natl Acad Sci USA 2017; 114: 1825–32. https://doi.org/10.1073/pnas.1621433114
Kyte SL, Toma W, Bagdas D, et al. Nicotine prevents and reverses paclitaxel-induced mechanical allodynia in a mouse model of CIPN. J Pharmacol Exp Ther 2018; 364: 110–9. https://doi.org/10.1124/jpet.117.243972
Toma W, Kyte SL, Bagdas D, et al. The α7 nicotinic receptor silent agonist R-47 prevents and reverses paclitaxel-induced peripheral neuropathy in mice without tolerance or altering nicotine reward and withdrawal. Exp Neurol 2019; 320: 113010. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2019.113010
Kawashiri T, Shimizu S, Shigematsu N, et al. Donepezil ameliorates oxaliplatin-induced peripheral neuropathy via a neuroprotective effect. J Pharmacol Sci 2019; 140: 291–4. https://doi.org/10.1016/j.jphs.2019.05.009
Cornblath DR, Chaudhry V, Carter K, et al. Total neuropathy score: validation and reliability study. Neurology 1999; 53: 1660–4. https://doi.org/10.1212/wnl.53.8.1660
Cavaletti G, Cornblath DR, Merkies ISJ, et al. The chemotherapy-induced peripheral neuropathy outcome measures standardization study: from consensus to the first validity and reliability findings. Ann Oncol 2013; 24: 454–62. https://doi.org/10.1093/annonc/mds329
Cavaletti G, Frigeni B, Lanzani F, et al. The Total Neuropathy Score as an assessment tool for grading the course of chemotherapy-induced peripheral neurotoxicity: comparison with the National Cancer Institute-Common Toxicity Scale. J Peripher Nerv Syst 2007; 12: 210–5. https://doi.org/10.1111/j.1529-8027.2007.00141.x
Gilchrist LS, Tanner L. The pediatric-modified total neuropathy score: a reliable and valid measure of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in children with non-CNS cancers. Support Care Cancer 2013; 21: 847–56. https://doi.org/10.1007/s00520-012-1591-8
Liniger C, Albeanu A, Bloise D, et al. The tuning fork revisited. Diabet Med 1990; 7: 859–64. https://doi.org/10.1111/j.1464-5491.1990.tb01319.x
Crausaz FM, Clavel S, Liniger C, et al. Additional factors associated with plantar ulcers in diabetic neuropathy. Diabet Med 1988; 5: 771–5. https://doi.org/10.1111/j.1464-5491.1988.tb01106.x
Bergin PS, Bronstein AM, Murray NM, et al. Body sway and vibration perception thresholds in normal aging and in patients with polyneuropathy. J Neurol Neurosurg Psychiatry 1995; 58: 335–40. https://doi.org/10.1136/jnnp.58.3.335
Whitton TL, Johnson RW, Lovell AT. Use of the Rydel-Seiffer graduated tuning fork in the assessment of vibration threshold in postherpetic neuralgia patients and healthy controls. Eur J Pain 2005; 9: 167–71. https://doi.org/10.1016/j.ejpain.2004.05.001
Kästenbauer T, Sauseng S, Brath H, et al. The value of the Rydel-Seiffer tuning fork as a predictor of diabetic polyneuropathy compared with a neurothesiometer. Diabet Med 2004; 21: 563–7. https://doi.org/10.1111/j.1464-5491.2004.01205.x
Claus D, Carvalho VP, Neundörfer B, et al. Perception of vibration. Normal findings and methodologic aspects. Nervenarzt 1988; 59: 138–42 (in German).
Chaudhry V, Rowinsky EK, Sartorius SE, et al. Peripheral neuropathy from taxol and cisplatin combination chemotherapy: clinical and electrophysiological studies. Ann Neurol 1994; 35: 304–11. https://doi.org/10.1002/ana.410350310
Berger T, Malayeri R, Doppelbauer A, et al. Neurological monitoring of neurotoxicity induced by paclitaxel/cisplatin chemotherapy. Eur J Cancer 1997; 33: 1393–9. https://doi.org/10.1016/s0959-8049(97)00103-2
Cavaletti G, Cavalletti E, Montaguti P, et al. Effect on the peripheral nervous system of the short-term intravenous administration of paclitaxel in the rat. Neurotoxicology 1997; 18: 137–45
Allen DT, Kiernan JA. Permeation of proteins from the blood into peripheral nerves and ganglia. Neuroscience 1994; 59: 755–64. https://doi.org/10.1016/0306-4522(94)90192-9
Zajączkowska R, Kocot-Kępska M, Leppert W, et al. Mechanisms of chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Int J Mol Sci 2019; 20: 1451. https://doi.org/10.3390/ijms20061451
Starobova H, Vetter I. Pathophysiology of chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Front Mol Neurosci 2017; 10: 174. https://doi.org/10.3389/fnmol.2017.00174
Park SB, Goldstein D, Krishnan AV, et al. Chemotherapy-induced peripheral neurotoxicity: a critical analysis. CA Cancer J Clin 2013; 63: 419–37. https://doi.org/10.3322/caac.21204
Stillman M, Cata JP. Management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Curr Pain Headache Rep 2006; 10: 279–87. https://doi.org/10.1007/s11916-006-0s033-z
Alberti P, Cavaletti G. Management of side effects in the personalized medicine era: chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Methods Mol Biol 2014; 1175: 301–22. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-0956-8_12
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2023 Експериментальна онкологія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
