ВПЛИВ БРАХІТЕРАПІЇ НА ЦИТОГЕНЕТИЧНІ ПАРАМЕТРИ ТА ОКИСНИЙ СТАТУС ЛІМФОЦИТІВ ПЕРИФЕРИЧНОЇ КРОВІ ХВОРИХ ЗІ ЗЛОЯКІСНИМИ НОВОУТВОРЕННЯМИ ГІНЕКОЛОГІЧНОЇ СФЕРИ
DOI:
https://doi.org/10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol-43-no-3.16514Ключові слова:
високодозна брахітерапія, високодозні джерела 192Ir, лімфоцити периферичної крові, цитогенетичний аналіз, радіаційно-індуковані хромосомні аберації.Анотація
Резюме. Стан питання: Найсучасніші технології брахітерапії з високодозними джерелами 60Co та 192Ir у сучасних протоколах лікування онкологічних хворих дозволяють досягти підведення максимальної дози до мішені, що становить клінічний інтерес, з мінімальним опроміненням навколишніх органів та тканин. Для мінімізації та подолання ранніх та пізніх радіаційних ускладнень необхідна розробка відповідних радіобіологічних критеріїв разом з удосконаленням фізико-технічних характеристик джерел іонізуючого випромінювання. Мета: Вивчити вплив опромінення 192Ir на хромосомні аберації та прооксидантний/антиоксидантний стан лімфоцитів крові у хворих зі злоякісними новоутвореннями гінекологічної сфери. Матеріали та методи: У дослідження були включені пацієнти (n = 45) з раком ендометрію, шийки матки та його рецидивом у піхві. Курс брахітерапії передбачав опромінення слизової оболонки піхви за допомогою апарату “GammaMed plus” для контактної променевої терапії з джерелом 192Ir. Зразки венозної крові та лімфоцити периферичної крові (ЛПК) для цитогенетичного аналізу були отримані перед опроміненням та через 20–24 год після сеансу брахітерапії. Прооксидантний/антиоксидантний статус визначали в гемолізатах методом хемілюмінесценції, індукованої перекисом водню. Результати: Середній рівень спонтанних хромосомних аберацій у ЛПК пацієнтів становив (7,8 ± 0,4) на 100 метафаз, що більш ніж удвічі перевищує верхню межу середніх значень популяції. Частота хромосомних аберацій у ЛПК пацієнтів після сеансу брахітерапії становила (15,3 ± 1,0) на 100 метафаз. Також було помічено підвищену інтенсивність генерації O2- у ЛПК після сеансу брахітерапії. Висновок: Локальне опромінення у дозі 6 Гр як перша дозова фракція брахітерапії викликає додаткові хромосомні аберації у ЛПК та посилює прооксидантні процеси в крові хворих зі злоякісними новоутвореннями гінекологічної сфери.
Посилання
Ivankova VS, Domina EA. Tumor Resistance Issues in Radiation Oncology. Kyiv: Zdorovya, 2012. 190 p (in Russian).
Grinevych YuA, Domina EA. Immune and Cytogenetic Effects of Densely and Sparsely Ionizing Radiation. Kyiv: Zdorovya, 2006. 200 p (in Russian).
Mazurik VK, Moroz B. Radiobiology issues and P53 protein. Rad Biol Radioecol 2001; 41: 548–54 (in Russian).
Holch P, Henry AM, Davidson S, et al. Acute and late adverse events associated with radical radiation therapy prostate cancer treatment: A systematic review of clinician and patient toxicity reporting in randomized controlled trials. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2017; 97: 495–510.
Deloch L, Derer A, Hartmann J, et al. Modern radiotherapy concepts and the impact of radiation on immune activation. Front Oncol 2016; 6: 141. https://doi.org/10.3389/fonc.2016.00141.
Domina EA, Pilinskaya MA, Petunin YuI, Klushin DA. Radiation Cytogenetics. Kyiv: Zdorovya, 2009. 368 p (in Russian).
Chargari C, Deutsch E, Blanchard P, et al. Brachytherapy: An overview for clinicians. CA Cancer J Clin 2019; 69: 386–401.
Dale RG, Deehan C. Brachytherapy. In: Radiobiological Modeling in Radiation Oncology. Dale R., Jones B., eds. London: Br Inst Radiobiology, 2007: 113–7.
Pop LA, Miller WT, Pias M, Kogel AJ. Radiation tolerance of rat spinal cord to pulsed dose rate (PDR) brachytherapy: the impact of differences in temporal dose distribution hach. Radiother Oncol 2000; 55: 301–5.
International Atomic Energy Agency. Biological dosimetry: Chromosomal aberrations analysis for dose assessment. Technical Reports series No. 260. Vienna: IAEA; 1986. 69 p.
Druzhina MO, Domina EA, Makovetska LI. Metabolites of oxidative stress as predictors of radiation and carcinogenic risks. Oncologiya 2019; 21: 170–5 (in Ukrainian).
International Atomic Energy Agency. Cytogenetic dosimetry: Applications in preparedness for and response to radiation emergencies. Vienna: IAEA; 2011. 232 p.
Serkiz YaI, Druzhina NA, Khriyenko AP, et al. Blood chemiluminescence under radiation exposure. Kyiv: Naukova Dumka Publ; 1989. 176 p (in Russian).
Liochev SI, Fridovich I. Lucigenin (bis-N-methylacridinium) as a mediator of superoxide anion production. Arch Biochem Biophys 1997; 337: 115–20.
Cox JD, Stetz J, Pajak TF. Toxicity criteria of the Radiation Therapy Oncology Group (RTOG) and the European Organization for Research and Treatment of Cancer (EORTC). Int J Radiat Oncol Biol Phys 1995; 31: 1341–6.
Gaziyev AI. Low efficiency of repair of critical DNA damage caused by radiation in low doses. Rad Biol Radioecol 2011; 51: 512–29 (in Russian).
Vorobiova NYu, Antonenko AV, Osipov AN. Features of reaction of blood lymphocytes from breast cancer patients to irradiation in vitro. Rad Biol Radioecol 2011; 51: 451–6 (in Russian).
Gaillard H, García-Muse T, Aguilera A. Replication stress and cancer. Nat Rev Cancer 2015; 15: 276–89.
Glavin OA, Domina EA, Mihailenko VM, et al. Metformin as a modifier of oxidative state of peripheral blood and the viability of human lymphocytes under the impact of ionizing radiation. Onkologiya 2020; 22: 84–91 (in Ukrainian).
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2023 Експериментальна онкологія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
